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Florística de áreas xerófilas de la Cordillera Oriental de los Andes (Boyacá, Colombia): I. Formaciones vegetales y riqueza de especies vasculares Floristics of xerophilous areas of the Eastern Andean Cordillera (Boyacá, Colombia): I. Plant formations and richness of vascular species Diego Giraldo-Cañas

https://orcid.org/0000-0003-0212-7489

Herbario Nacional Colombiano (COL), Instituto de Ciencias Naturales, Universidad Nacional de Colombia, Bogotá D. C., Colombia. Correo electrónico: dagiraldoc@unal.edu.co

Recibido: 05-09-2025

Aprobado: 11-10-2025

Publicado: 27-02-2026

Artículo de Investigación

## Resumen

(35/46), las Fabaceae (19/22), las

Polypodiaceae (6/16), las Cyperaceae

Se estudiaron las formaciones vegetales (8/14), las Bromeliaceae (5/13) y las y se realizó el inventario de plantas Orchidaceae (7/12), mientras que los vasculares de una pequeña área xerófila géneros más diversificados fueron en la Cordillera Oriental andina Tillandsia (8 especies), Eragrostis (6), (Boyacá, Colombia). Se reconocieron Paspalum (6), Oxalis (5), Pleopeltis (5) nueve tipos de formaciones vegetales y Solanum (5).

diferentes. Se encontraron 355 especies

vasculares, representantes de 77 Palabras clave: Bosques secos familias y 247 géneros. De éstas, 24 andinos, bosques andinos, comunidades especies son endémicas (6,8%) y 46 xerófilas, flora de Colombia, xerofitia son naturalizadas (13%). Las Poaceae andina.

constituyeron la familia con el mayor

número de especies naturalizadas en la Abstract zona de estudio (15 especies), seguida The plant formations were studied and por las Asteraceae (11 especies). an inventory of vascular plants was De las colecciones realizadas, ocho made in a small xerophilous area in the correspondieron a especies nuevas, Eastern Andean Cordillera (Boyacá, dos fueron los primeros registros Colombia). Nine different types of para Sudamérica, seis fueron nuevos plant formations were recognized.

registros para Colombia y 35 especies A total of 355 vascular species were correspondieron a los primeros registros found, representing 77 families and 247

para el departamento de Boyacá. Las genera. Of these, 24 species are endemic familias más ricas fueron las Poaceae (6.8%) and 46 are naturalized (13%).

(39 géneros/67 especies), las Asteraceae The Poaceae constituted the family

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Giraldo-Cañas: Flora xerofítica, Boyacá - Colombia with the largest number of naturalized gradientes ambientales y altitudinales species in the study area (15 species), (aislamiento ecológico) (Zapata, 2013).

followed by the Asteraceae (11 species).

Of the collections made, eight are new En los Andes septentrionales (Colombia species, two are the first records for y Venezuela), se encuentran algunas South America, six are new records for formaciones vegetales xerófilas de Colombia, and 35 species are the first media y alta montaña, distribuidas records for the department of Boyacá. de manera irregular y aisladas entre The richest families were Poaceae (39 los 2000 y los casi 3000 m de altitud.

genera/67 species), Asteraceae (35/46), A estas áreas en Colombia se les Fabaceae (19/22), Polypodiaceae (6/16), denomina las formaciones xerofíticas Cyperaceae (8/14), Bromeliaceae (5/13) o xerófilas y subxerofíticas, las cuales and Orchidaceae (7/12), while the most constituyen enclaves secos altoandinos diversified genera were Tillandsia (8 de la Cordillera Oriental (IAvH, 1997).

species), Eragrostis (6), Paspalum (6), Estos enclaves secos altoandinos se Oxalis (5), Pleopeltis (5), and Solanum encuentran principalmente en el altiplano (5).

cundiboyacense (departamentos de

Boyacá y Cundinamarca) y presentan

Key words: Andean dry forests, Andean temperaturas medias anuales de 13°C, forests, xerophytic communities, Flora los cuales corresponden a la formación of Colombia, Andean xerophytia.

“bosque seco montano bajo” (bs-

MB) (IAvH, 1997). Dichos enclaves

## Introducción

se caracterizan por sus suelos poco

La cadena montañosa de Los Andes profundos (10–15 cm), fácilmente constituye un área con una excepcional erodables, por su poco humus y con riqueza de especies, ya que en estas frecuencia con un horizonte argílico montañas se encuentran tres centros de endurecido (IAvH, 1997).

concentración de la diversidad vegetal Los tipos de vegetación comprendidos del planeta (Zapata, 2013), con cerca del en estas formaciones xerofíticas tienen 25% de la diversidad biológica mundial una diversidad considerable, derivada (Jørgensen et al., 2006), y su porción probablemente de la ocurrencia de septentrional es una de las regiones más varios eventos migratorios provenientes diversas de todo el globo (Churchill de zonas análogas en el subtrópico et al. , 1995). Estudios recientes han americano (Medina, 1985). Los tipos sugerido que las heterogeneidades de vegetación incluyen bosques y topográficas y ambientales, resultantes arbustales caducifolios, arbustales de la compleja geología e historia secos siempre verdes, arbustales climática de Los Andes, pueden haber espinosos o espinares, arbustales y sido los mayores promotores de la matorrales suculentos o cardonales y divergencia de especies por medio del los desiertos (Medina, 1985). Según aislamiento geográfico (vicarianza) Medina (1985), “la investigación o por diferenciación ecológica en

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en este tipo de zonas debería estar inventarios completos de especies dirigida al análisis de los siguientes (IAvH, 1997). En este contexto, se aspectos: a) procesos de desarrollo realizó un inventario florístico detallado y mantenimiento de la fertilidad del de varias comunidades xerófilas andinas suelo, b) capacidad productiva de los en la Cordillera Oriental (Boyacá, ecosistemas y su recuperación después Colombia), con el fin de cubrir algunos de ser perturbados, c) comportamiento vacíos de información florística de este fenológico de la vegetación en relación tipo de ambientes. Además, en palabras a la variabilidad climática, d) proceso de de González & López-Camacho (2012), ciclaje de nutrientes y e) evaluación de la creciente pérdida y alteración de la perturbación ecológica producto de ecosistemas andinos y la importancia de los métodos de utilización agropecuaria su conservación, indican la relevancia tradicional”. A estos cinco aspectos de efectuar esfuerzos encaminados a la tratados por Medina (1985), habría documentación y la publicación de la que adicionar los siguientes ocho biodiversidad allí presente.

aspectos (Giraldo-Cañas, obs. pers.):

a) realización de inventarios biológicos Materiales y métodos (flora, fauna, microbiota) de estas áreas, Inventario florístico. El inventario b) estudio de su estructura vegetal, florístico se llevó a cabo entre octubre c) seguimiento de la sucesión de sus de 2014 y octubre de 2025, tiempo en el diferentes formaciones vegetales, d) cual se realizaron varias expediciones, desarrollo de estudios sobre polinización las cuales abarcaron tanto las épocas y dispersión, e) realización de estudios secas como las de lluvias. Los muestreos paleoambientales, f) desarrollo de se realizaron en forma aleatoria y planes de restauración, g) realización cubrieron un área de cinco hectáreas; de diversos análisis etnobiológicos y h) éstos comprendían la herborización de desarrollo de iniciativas en educación ejemplares de plantas vasculares en ambiental. Así y en palabras de Medina estado reproductivo, con base en los (1985), estos estudios servirían de base estándares de inventarios florísticos y para delinear sistemas de utilización y de preservación de las muestras (Cerón recuperación de ecosistemas alterados Martínez, 2015).

de zonas áridas y semi-áridas tropicales. Trabajo de herbario. Los ejemplares A pesar del área relativamente pequeña recolectados se determinaron en el que ocupan las formaciones xerófilas en Herbario Nacional Colombiano (COL), Colombia y de su bajo número de especies en donde también se encuentran en comparación con las formaciones depositados bajo la serie de colección de vegetales húmedas montanas y de D. Giraldo-Cañas. Las determinaciones tierras bajas, el conocimiento sobre la taxonómicas se realizaron con base en florística de estas formaciones es escaso. diferentes obras como floras, flórulas En particular, la flora de los enclaves y monografías de grupos de plantas secos de Boyacá y Cundinamarca es andinas, y en unos pocos casos, por poco conocida, pues no se cuenta con

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Giraldo-Cañas: Flora xerofítica, Boyacá - Colombia medio de la comparación con material líquenes de Colombia” (Bernal et al. , de referencia depositado en el herbario 2016). La consideración de los primeros COL. También se contó con la ayuda registros para la flora de Colombia y de algunos especialistas, quienes Boyacá se basó en Bernal et al. (2016) y confirmaron o corrigieron algunas de Carvajal Cogollo & Rangel-Ch. (2022).

las determinaciones realizadas por el

autor de la presente contribución [José Área de estudio Carmelo Murillo (helechos), Julio La zona de estudio corresponde a Betancur (Bromeliaceae), Cristian varias comunidades xerófilas ubicadas Castro (Orchidaceae), Guillermo Pino en la Cordillera Oriental andina, Infante (Crassulaceae), Deivid Andrés enclavadas en el municipio de Villa de Fonseca Cortés (Fabaceae), Ángelo Leyva (valle de Zaquecipá, Boyacá, Danilo

Plata-Castro

(Moraceae), Colombia, un territorio ancentral de Lucas Lima (helechos), Carlos Parra los Muiscas) (Figura 1), las cuales, en (Myricaceae, Myrtaceae), Nicolás conjunto, abarcaban cinco hectáreas Ramírez (Asteraceae), Orlando Rivera de extensión, correspondientes a un (Apiaceae), Nelson Salinas (Ericaceae), terreno privado; el área se encuentra Wilson Rodríguez (helechos), Humberto a 2350 m de altitud y sujeta a una Mendoza (Melastomataceae), Édgar marcada estacionalidad climática, cuyo Linares (criptógamas no vasculares), promedio de lluvias es de 942 mm/año.

José Luis Fernández Alonso (Lamiaceae, Las coordenadas medias, tomadas en el Nyctaginaceae),

Charlotte

Taylor centro del área estudiada, corresponden (Rubiaceae), Roberto Manuel Salas a 5°40’16’’N–73°32’51’’O. Así, la zona (Rubiaceae), David Sanín (helechos)]. investigada corresponde a los enclaves Casi todo el material recolectado se xerofíticos (Rivera Ospina et al. , 2004), encuentra determinado a nivel de a la selva montana siempreverde seca especie, salvo contados casos, para (Bono, 1996), a la xerofitia andina o la los cuales no se dispone de revisiones vegetación xerofítica (Huber & Riina, taxonómicas publicadas y/o carecen 1997), a la xerofitia (Dugand Gnecco, de especialistas en la actualidad. Los 1973), al bosque seco subtropical arreglos de las familias vasculares (Rangel-Ch. et al. , 1997) o al bosque están basados en Christenhusz et al. seco montano bajo (bs-MB) (IAvH, (2017), excepto para Agavaceae, la 1997). Ante esta proliferación de cual fue segredada recientemente de clasificaciones diferentes y variados Asparagaceae (Nyffeler & Eggli, 2020; nombres, aquí se opta por denominar Thiede & Eggli, 2020). Las especies la zona como áreas xerófilas, ya que aceptadas, los sinónimos, los nombres como se verá más adelante, no sólo de los autores de todos los binomios corresponden a un único tipo de aquí considerados, la ortografía de los formación vegetal y menos aún, no sólo binomios, así como el estatus de cada a bosques.

especie (nativa, endémica, naturalizada),

se tomaron del “Catálogo de plantas y

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Figura 1. Vistas generales del área de estudio en diferentes picos pluviométricos (Cordillera Oriental andina, Villa de Leyva, Boyacá, Colombia). Nótese al fondo la montaña sagrada de Iguaque (fotografías: D. Giraldo-Cañas).

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Giraldo-Cañas: Flora xerofítica, Boyacá - Colombia Resultados y discusión

encuentran numerosos individuos de

pequeños bejucos de Ditassa, Galactia, Riqueza de formaciones vegetales. A Ipomoea, Oxypetalum y Passiflora, pesar de que el área estudiada es muy así como algunas hemiparásitas de pequeña (tan sólo cinco hectáreas de Dendrophthora y Phoradendron. En extensión), se encontraron nueve tipos estas formaciones el epifitismo es, de formaciones vegetales, las cuales se en términos de biomasa, escaso y distribuyen de manera aparentemente muy pobre en el número de especies, aleatoria y entremezcladas las unas con representado por 12 especies de las otras (Figura 2), pero realmente su Bromeliaceae ( Catopsis, Racinaea, distribución corresponde a una serie Tillandsia, Vriesea) y algunos helechos, de factores, entre los que se destacan, hepáticas, musgos, hongos liquenizados el tipo de sustrato, la pendiente, la y Stelis (Orchidaceae). A pesar de geomorfología, la humedad acumulada que el área estudiada corresponde a en el sustrato, los eventos de sucesión, una región de xerofitia, con marcadas los elementos de alteración antrópica, estacionalidades de sequía durante cada entre otros. A continuación, se enumeran año, sólo hay en la zona una especie y se describen las nueve formaciones caducifolia, Ficus americana Aubl.

vegetales presentes en el área de estudio. subsp. andicola (Standl.) C. C. Berg 1. Arbustales secos o xerofíticos, (Moraceae) (Giraldo-Cañas, obs. pers.).

matorrales secos o bosques secos 2. Pastizales nativos. Éstos montano-bajos siempreverdes. Estas corresponden a áreas abiertas, las formaciones presentan una distribución cuales están dominadas por numerosas discontinua en el área de estudio y especies de gramíneas nativas ( Agrostis, nunca superan los 5–6 m de altura, Andropogon, Anthaenantia, Aristida, con numerosos arbustos y arbolitos Axonopus, Bothriochloa, Bouteloua, raquíticos siempreverdes [excepto Bromus, Calamagrostis, Chloris, Ficus americana Aubl. subsp. andicola Cortaderia, Dichanthelium, Digitaria, (Standl.) C. C. Berg, la cual es la Echinochloa, Eragrostis, Heteropogon, única especie caducifolia en la zona Jarava, Mnesithea, Muhlenbergia, estudiada] y exhiben un dosel irregular Nassella, Oplismenus, Paspalum, con una cobertura baja a media. Estas Polypogon, Schizachyrium, Setaria, formaciones están caracterizadas por Sporobolus, Steinchisma, Tripogon y Acaciella, Achyrocline, Baccharis, Trisetum), aunque también puede haber Bejaria, Calea, Chromolaena,

especies naturalizadas, pertenecientes

Clibadium, Clusia, Crotalaria, Croton, a los géneros Anthoxanthum, Dodonaea, Duranta, Ficus, Furcraea, Cenchrus, Cynodon, Digitaria, Myrcianthes, Myrsine, Phyllanthus, Eleusine, Eragrostis, Holcus, Lolium, Picramnia, Psidium, Rubus, Solanum, Megathyrsus, Melinis y Polypogon. En Tara, Tibouchina, Vachellia, Varronia, estos pastizales también se encuentran Viburnum, Xylosma, en donde se entremezcladas numerosas especies

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de Cyperaceae ( Bulbostylis, Carex, sylvesteriana Giraldo-Cañas, Furcraea Cyperus, Fimbristylis, Kyllinga y cabuya Trel., Furcraea foetida (L.) Rhynchospora).

Haw. y Furcraea selloana K. Koch

(Agavaceae).

## 3. Afloramientos rocosos con plantas

vasculares. En la zona de estudio, 6. Herbazales (sin rosetas de grandes los paisajes están caracterizados por dimensiones). Estas formaciones numerosos afloramientos rocosos de corresponden a áreas abiertas dominadas diferentes dimensiones, geomorfologías por especies herbáceas (excepto por y altitudes. En éstos son comunes Poaceae), las cuales están caracterizadas numerosas

especies

de

varias y dominadas por numerosas especies

familias y géneros, correspondientes de diferentes familias ( Castilleja, a elementos tanto herbáceos como Coccocypselum, Cuphea, Dalea, leñosos

( Anthurium,

Clidemia, Desmodium, Echeandia, Euphorbia, Clusia, Echeveria, Epidendrum,

Evolvulus, Galianthe, Hypoxis,

Ficus, Lantana, Leandra, Melocactus, Juncus, Mecardonia, Melilotus, Oxalis, Opuntia, Peperomia, Prosthechea, Plantago, Polygala, Sisyrinchium, Puya, Hylocereus, Sida, Stelis, Spermacoce, Stenandrium, Zornia Tibouchina, numerosas especies de y varias especies de Asteraceae y helechos y gramíneas).

Cyperaceae).

4. Afloramientos rocosos con plantas 7. Bosquecillos ribereños de la no vasculares. Éstos corresponden minúscula quebrada El Curo.

a las rocas desprovistas de plantas Dado que la disponibilidad de agua vasculares, con una baja cobertura es permamente en las riberas de este y pobre riqueza de musgos ( Bryum, pequeño curso de agua, se establecen Campylopus, Campylopus, Dicranum, bosquecillos con un dosel de unos 8–9

Hedwigia, Macromitrum, Orthotrichum, m de altura y con arbolitos y arbustos Polytrichum, Squamidium), hepáticas correspondientes a una mayor riqueza (dos especies indeterminadas de de especies, tales como Calycolpus, Lejeuneaceae) y hongos liquenizados Cestrum, Clusia, Crotalaria, Croton, ( Hypotrachina, Parmotrema, Physcia, Duranta, Escallonia, Ficus, Indigofera, Racodium, Teloschistes, Usnea).

Inga, Mauria, Miconia, Myrcianthes, Myrsine, Otholobium, Phyllanthus,

5. Rosetales. En la zona de estudio son Piper, Psidium, Salix, Solanum, frecuentes los rosetales constituidos por Viburnum y Xylosma. En estos hierbas de grandes dimensiones, las boquecillos son frecentes los bejucos de cuales proliferan en diferentes tipos de Cuscuta, Galactia y Passiflora, así como sustratos (rocosos, arenosos, arcillosos), algunas hemiparásitas de Phoradendron como Puya sp. nov. (Bromeliaceae; nervosum; aquí el epifitismo es Fabián García-Zambrano, COL, com. abundante en términos de biomasa pers.) y Agave americana L., Agave pero poco diverso, representado por cordillerensis Lodé & Pino, Agave

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Giraldo-Cañas: Flora xerofítica, Boyacá - Colombia Anthurium, helechos, hepáticas, hongos 9. Áreas de sustratos pedregoso-liquenizados, musgos, Peperomia, arenosos con cobertura vegetal casi Tillandsia y algunas orquídeas.

nula. Estas formaciones corresponden

a los localmente denominados

8. Vegetación helófila (en bordes de “cascajales”, los cuales no poseen un pequeños cuerpos de agua o incluso, suelo definido y básicamente el sustrato plantas estrictamente acuáticas). En está constituido por rocas de pequeñas la zona de estudio, además de pequeños dimensiones entremezcladas con cuerpos de agua ubicados en los abundantes arenas. Si bien la riqueza afloramientos rocosos, son frecuentes de plantas puede ser media, la biomasa los reservorios de agua lluvia, los cuales es muy baja, ya que hay por área muy son construidos por los habitantes pocos individuos de plantas, los cuales como fuentes permanentes de agua están muy aislados los unos de los para los animales, los jardines y los otros. Entre los representantes más cultivos. En éstos proliferan diferentes comunes tenemos a Aristida, Bidens, especies pertenecientes a varias familias Cylindropuntia, Digitaria, Dodonaea, ( Cyperus, Eleocharis, Equisetum, Eragrostis, Erigeron, Evolvulus, Juncus, Limnobium, Ludwigia,

Hesperomeles, Lobelia, Lycianthes, Nymphaea, Polygonum, Steinchisma, Paspalum.

Typha).

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Figura 2. Formaciones vegetales en áreas xerófilas de la Cordillera Oriental andina (Villa de Leyva, Boyacá, Colombia). A y B. Arbustales-matorrales y bosques secos montanos bajos; C. Pastizales nativos; D. Afloramientos rocosos con plantas vasculares; E. Rosetales de Agavaceae; F. Bosquecillos ribereños de la quebrada El Curo; G. Vegetación helófila; H. Áreas de sustratos pedregosos-arenosos con cobertura vegetal casi nula (fotografías: D. Giraldo-Cañas).

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Giraldo-Cañas: Flora xerofítica, Boyacá - Colombia Es curioso que en estos enclaves Riqueza general de plantas vasculares xerofíticos de la Cordillera Oriental, (inventario). El inventario ascendió a ubicados entre los 2000 y los 2800 m 355 especies vasculares, representantes de altitud, tanto en Boyacá como en de 77 familias y 247 géneros (Tabla Cundinamarca (Colombia), no existen 1). De éstas, 310 especies son nativas los cardonales de Cactaceae columnares, (las cuales incluyen 24 especies los cuales son comunes en este de tipo endémicas) y 46 especies naturalizadas.

de xerofitia andina y en este mismo Las familias más ricas fueron las gradiente altitudinal, como sucede Poaceae (39 géneros/67 especies), en Ecuador, Perú, Bolivia, Argentina las Asteraceae (35/46), las Fabaceae y Chile (Giraldo-Cañas, obs. pers.). (19/22), las Polypodiaceae (6/16), las Asimismo, en este tipo de ambiente Cyperaceae (8/14), las Bromeliaceae de estos países, las Cactaceae están (5/13) y las Orchidaceae (7/12) (Tabla ricamente diversificadas y exhiben un 2). Por su parte, los géneros más destacado endemismo (Kiesling, 1975, diversificados fueron Tillandsia (8

Antezana & Navarro, 2002, López, especies), Eragrostis (6), Paspalum (6), 2003, Arakaki et al. , 2006, Galán de Oxalis (5), Pleopeltis (5) y Solanum Mera et al. , 2012, Ortega-Baes et al. , (5) (Tabla 3) (véase el anexo 1). Estos 2015), cosa que no sucede en la presente géneros presentan una plasticidad área de estudio, toda vez que dicha ecológica muy amplia tal como lo familia apenas está representada por documentaron Gómez-Pompa (1971) y tan sólo seis especies [ Cylindropuntia Rangel (1995), lo que les favorece en la tunicata (Lehm.) F. M. Knuth, colonización de un espectro ambiental Hylocereus megalanthus (Vaupel) más grande (principalmente elementos Ralf Bauer, Mammillaria columbiana secundarios). Dadas las condiciones y Salm-Dyck, Melocactus andinus N. las características ecológicas del área P. Taylor, Opuntia ficus-indica (L.) de estudio, muchas de sus especies Mill., Opuntia schumannii A. Berger]. son propias de estados sucesionales Al respecto, no tengo explicaciones tempranos, las cuales presentan un para esta situación. No obstante, gradiente geográfico amplio, tanto a podría atribuirse un reemplazamiento nivel latitudinal como altitudinal.

ecológico de las Cactaceae columnares

por rosetas de grandes dimensiones, La alta riqueza florística de la zona como las correspondientes a seis de estudio está dada principalmente especies de Agavaceae ( Agave y por la gran cantidad de hierbas, Furcraea), y en menor medida, a una contrariamente a lo que sucede en los especie de Puya (Bromeliaceae), tal bosques neotropicales de tierras bajas cual ha sido documentado por otros (< 1000 m alt.), donde el componente autores ( e.g. Fernández-Alonso, 1997, arbóreo-arbustivo es, generalmente, el IAvH, 1997, Van der Hammen, 1997), más diverso. Así, la riqueza de especies aunque persiste una apreciable cantidad de la zona de estudio representa el 6,8%

de individuos de Opuntia spp.

de la flora del departamento de Boyacá,

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la cual asciende a 5240 especies dada la pequeña área de la zona de vasculares (Carvajal Cogollo & Rangel- estudio (5 ha).

Ch., 2022), un porcentaje considerable

Tabla 1. Riqueza de las plantas vasculares de áreas xerófilas de la Cordillera Oriental de los Andes (Boyacá, Colombia). Los arreglos de las familias vasculares están basados en Christenhusz et al. (2017), excepto para Agavaceae, la cual fue segredada recientemente de Asparagaceae (Nyffeler & Eggli, 2020; Thiede & Eggli, 2020).

## Grupo vegetal

Número de

Número de

Número de

familias

## géneros

especies

Lycopodiidae

2

2

3

Equisetales

1

1

2

Helechos

6

16

29

leptosporangiados

Nymphaeanae

1

1

1

Magnólidas

1

2

4

Monocotiledóneas

15

76

130

Eudicotiledóneas

51

149

186

## Total

### 77

247

355

Tabla 2. Familias más ricas en especies de plantas vasculares de áreas xerófilas de la Cordillera Oriental de los Andes (Boyacá, Colombia). Los arreglos de las familias vasculares están basados en Christenhusz et al. (2017), excepto para Agavaceae, la cual fue segredada recientemente de Asparagaceae (Nyffeler & Eggli, 2020; Thiede

& Eggli, 2020).

Familia

Número de géneros

## Número de especies

### Poaceae

39

67

Asteraceae

35

46

Fabaceae

19

22

Polypodiaceae

6

16

Cyperaceae

8

14

Bromeliaceae

5

13

Orchidaceae

7

12

Rubiaceae

7

9

22

Giraldo-Cañas: Flora xerofítica, Boyacá - Colombia Solanaceae

4

8

Agavaceae

2

6

Cactaceae

5

6

Malvaceae

5

6

Tabla 3. Géneros más ricos en especies de plantas vasculares de áreas xerófilas de la Cordillera Oriental de los Andes (Boyacá, Colombia).

Género (familia)

## Número de especies

Tillandsia (Bromeliaceae)

8

Eragrostis (Poaceae)

6

Paspalum (Poaceae)

6

Oxalis (Oxalidaceae)

5

Pleopeltis (Polypodiaceae)

5

Solanum (Solanaceae)

5

Axonopus (Poaceae)

4

Digitaria (Poaceae)

4

Epidendrum (Orchidaceae)

4

Erigeron (Asteraceae)

4

Passiflora (Passifloraceae)

4

Hallazgo de nuevas especies para Primeros registros para la flora de la ciencia. Se detectaron ocho nuevas Sudamérica. De las especies registradas especies, las cuales se han descrito y en el área de estudio, dos constituyen publicado o se encuentran en proceso los primeros registros para Sudamérica, de publicación, e.g. Agave sylvesteriana Echeandia flavescens (Schult. & Schult.

Giraldo-Cañas (Agavaceae), Digitaria f.) Cruden (Asparagaceae) (Giraldo-andicola Giraldo-Cañas, Digitaria Cañas, 2015) y Digitaria velutina cardenasiana Giraldo-Cañas, Mnesithea (Forssk.) P. Beauv. (Poaceae) (Giraldo-sp. nov., Nassella sp. nov. (Poaceae), Cañas, 2016).

Eleocharis sp. nov. (Cyperaceae), Puya Primeros registros para la flora de sp. nov. (antes reconocida como Puya Colombia. Se registraron seis especies bicolor Mez) [Bromeliaceae; Fabián por primera vez para Colombia, a saber, García-Zambrano (COL), com. pers.] Agave americana L. (Agavaceae), y Serpocaulon sp. nov. [Polypodiaceae; Andropogon aequatoriensis Hitchc., José Carmelo Murillo (COL), com. Digitaria velutina (Forssk.) P.

pers.].

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Beauv.

(Poaceae),

Echeandia f.) W. E. Higgins (Orchidaceae), Salix flavescens (Schult. & Schult. f.) Cruden humboldtiana Willd. (Salicaceae), (Asparagaceae), Kalanchoe densiflora Scoparia dulcis L. (Plantaginaceae), Rolfe. (Crassulaceae) y Tragopogon Solanum dolichosepalum Bitter

porrifolius L. (Asteraceae).

(Solanaceae), Spananthe paniculata

Jacq.

(Apiaceae)

y

Vachellia

Primeros registros para la flora macracantha (Willd.) Seigler & Ebinger de Boyacá. Además de las seis (Fabaceae).

especies anteriores, se registraron, por

primera vez, 29 especies adicionales Especies endémicas. Se documentaron para Boyacá, como son Anthurium 24 especies endémicas (lo cual glaucospadix Croat (Araceae), Catopsis equivale al 6,8% de endemismo), sessiliflora (Ruiz & Pav.) Mez, las cuales pueden subdividirse en Vriesea myriantha (Baker) Betancur microendémicas [ Eleocharis sp. nov.

(Bromeliaceae),

Dichanthelium (Cyperaceae), Mnesithea sp. nov., acuminatum (Sw.) Gould & C. A. Clark, Nassella sp. nov. (Poaceae), Serpocaulon Eragrostis airoides Nees, Eragrostis sp. nov. (Polypodiaceae)], endémicas intermedia Hitchc., Nassella mucronata regionales

[ Agave sylvesteriana

(Kunth) R. W. Pohl (Poaceae), Giraldo-Cañas (Agavaceae),

Diodella apiculata (Roem. & Schult.) Chromolaena leivensis (Hieron.) R.

Delprete, Spermacoce suaveolens M. King & H. Rob. (Asteraceae), (G. Mey.) Kuntze (Rubiaceae), Galactia lindenii Burkart (Fabaceae), Furcraea foetida (L.) Haw., Furcraea Galianthe bogotensis (Kunth) E. L.

selloana K. Koch (Agavaceae), Cabral & Bacigalupo (Rubiaceae),

Gamochaeta simplicicaulis (Willd. Lepidium trianae Thell. (Brassicaceae), ex Spreng.) Cabrera, Schkuhria Peperomia santanderana Trel. & pinnata (Lam.) Thell. (Asteraceae), Yunck. (Piperaceae), Puya sp. nov.

Hylocereus megalanthus (Vaupel) (Bromeliaceae)] y endémicas de amplia Ralf Bauer (Cactaceae), Hypericum distribución en Colombia [ Anthurium thesiifolium Kunth (Hypericaceae), glaucospadix Croat (Araceae), Clusia Mentzelia scabra Kunth (Loasaceae), alata Planch. & Triana (Clusiaceae), Myrcianthes alaternifolia (Benth.) Digitaria andicola Giraldo-Cañas, Grifo ex B. Holst & M. L. Kawasaki Digitaria cardenasiana Giraldo-

(Myrtaceae), Myrsine latifolia (Ruiz Cañas (Poaceae), Ditassa longiloba

& Pav.) Spreng. (Primulaceae), Benth. (Apocynaceae), Echeveria Nothoscordum gracile

(Aiton) ballsii E. Walther (Crassulaceae), Stearn (Amaryllidaceae), Nymphaea Epidendrum arachnoglossum André, elegans

Hook.

(Nymphaeaceae), Epidendrum ibaguense Kunth Passiflora edulis Sims (Passifloraceae), (Orchidaceae), Evolvulus bogotensis Portulaca oleracea L. (Portulacaceae), Ooststr. (Convolvulaceae), Lantana Epidendrum ibaguense Kunth, boyacana Moldenke (Verbenaceae), Prosthechea grammatoglossa (Rchb. Pilostyles boyacensis F. González

24

Giraldo-Cañas: Flora xerofítica, Boyacá - Colombia

& Pabón-Mora (Apodanthaceae), asper (L.) Hill, Tithonia diversifolia Stachys bogotensis Kunth (Lamiaceae), (Hemsl.) A. Gray, Tragopogon Varronia bullulata (J. Estrada & García- porrifolius L., Villanova oppositifolia Barr.) J. S. Mill. (Cordiaceae)].

Lag. (Asteraceae), Cardamine flexuosa

With. (Brassicaceae), Chenopodium

Especies naturalizadas. En la zona ambrosioides L. (Amaranthaceae), de estudio, las plantas naturalizadas Crocosmia × crocosmiiflora (Lemoine) constituyen, en algunos casos, N. E. Br. , Gladiolus communis L.

serios eventos de invasión, lo que (Iridaceae), Datura stramonium L.

repercute en desplazamientos de flora (Solanaceae), Euphorbia peplus L.

nativa y homogeneización de varias (Euphorbiaceae), Juncus tenuis Willd.

formaciones vegetales. Entre las (Juncaceae), Medicago sp., Melilotus especies naturalizadas más agresivas albus Medik., Trifolium pratense L., en el área de estudios, tenemos en Trifolium repens L. (Fabaceae), Opuntia los primeros lugares y en orden de ficus-indica (L.) Mill. (Cactaceae), agresividad

(Giraldo-Cañas,

obs. Plantago major L. (Plantaginaceae), pers.), a Phyllostachys aurea Rivière Portulaca oleracea L. (Portulacaceae),

& C. Rivière, Melinis minutiflora Rumex obtusifolius L. (Polygonaceae),

P. Beauv., Melinis repens (Willd.) Silene gallica L. (Caryophyllaceae), Zizka, Cenchrus clandestinus (Chiov.) Syzygium jambos (L.) Alston (Myrtaceae)

Morrone (Poaceae), Cylindropuntia y Verbascum virgatum Stokes tunicata (Lehm.) F. M. Knuth (Schrophulariaceae). Así, en la zona (Cactaceae) y Kalanchoe densiflora de estudio hay actualmente 46 especies Rolfe. (Crassulaceae). Además de naturalizadas, lo cual representa el 13%

las anteriores, se encuentran como de la flora inventariada. Cabe destacar naturalizadas en la región a las siguientes que las Poaceae constituyen la familia especies, Agrostis stolonifera L., con el mayor número de especies Anthoxanthum odoratum L., Cenchrus naturalizadas en la zona de estudio (15

setaceus (Forssk.) Morrone, Cynodon especies), seguida por las Asteraceae dactylon (L.) Pers., Digitaria velutina (11 especies).

(Forssk.) P. Beauv., Eleusine indica

(L.) Gaertn., Holcus lanatus L., Lolium Conclusiones multiflorum Lam., Lolium perenne L., Megathyrsus maximus (Jacq.) B. K. A pesar de que el área estudiada es Simon & S. W. L. Jacobs, Polypogon muy pequeña y además, ha estado monspeliensis (L.) Desf. (Poaceae), sujeta a fuertes alteraciones y presiones Bidens pilosa L., Conyza bonariensis antrópicas desde

los

primeros

(L.) Cronquist, Emilia fosbergii pobladores europeos hasta la actualidad Nicolson, Erigeron karvinskianus DC., (deportes de motor, parcelaciones para Hypochaeris radicata L., Pterocaulon fincas de recreo y hoteles, ganadería alopecuroides (Lam.) DC., Senecio vacuna, caprina y ovina, cultivos de madagascariensis

Poir.,

Sonchus cereales, cebollas y tomates, explotación

Cinchonia Vol. 21, #1, 2026

25

de canteras, incendios forestales), posee desarrolle las adaptaciones necesarias una rica flora con numerosas novedades para colonizar áreas secas. Esto último florísticas, representadas en los hallazgos se relaciona con la gran cantidad de de nuevas especies y variados nuevos especies nativas que exhiben una amplia registros para las floras de Boyacá, distribución en el neotrópico, pero de Colombia y Sudamérica. Además, su manera disyunta, ya que están asociadas riqueza florística no sólo se limita al a áreas secas y muchas de estas áreas no destacado número de especies, sino presentan contigüidad geográfica desde también a la cantidad de formaciones México hasta la Argentina y Chile.

vegetales diferentes, representadas por Por lo tanto, dichas especies no son nueve (9) configuraciones distintas.

disyuntas, más bién los hábitats donde

éstas se establecen son “disyuntos”.

El área analizada es florísticamente

similar a otras áreas secas montanas de A pesar de que el área estudiada América tropical y subtropical (desde corresponde a una región de xerofitia, México hasta la Argentina), ya que con marcadas estacionalidades de presentan muchos elementos florísticos sequía durante cada año, sólo hay en en común –no sólo en términos de la zona una especie caducifolia, Ficus familias y géneros, sino también en americana Aubl. subsp. andicola torno de muchas especies de amplia (Standl.) C. C. Berg (Moraceae).

distribución en el neotrópico–, aunque

el área colombiana presentó una mayor La información aquí presentada riqueza de especies (355 especies constituye la base para adelantar de plantas vasculares) y una mayor investigaciones sobre

dinámica

expresión de diversidad filogenética, sucesional, recuperación ambiental y toda vez que había representantes de conservación de estas importantes y numerosos linajes (Tabla 1, Anexo diversos áreas xerófilas de los Andes 1). Entre todas las plantas vasculares, septentrionales. Además, en Colombia 24 especies son endémicas (6,8% de ningún área dentro del sistema de parques endemismo) y 46 son naturalizadas, nacionales naturales ha sido establecida una cifra preocupante, ya que éstas para la protección y la conservación representan el 13% de la flora local de áreas xerófilas (IAvH, 1997: 104).

actual.

Es por esta situación que aquí se

presentan algunos insumos en torno de

Los datos hallados respaldan la teoría de la vegetación y el inventario de plantas Pennington et al. (2009), en el sentido vasculares, con el fin de incentivar y de que la probabilidad de dispersión quizás, acelerar, una declaratoria de de un linaje de áreas secas tropicales zonas protegidas dentro del sistema a otra área seca tropical distante nacional ambiental, que involucre una (nichos filogenéticos), es más alta que expresión de áreas xerófilas andinas de la probabilidad de que una especie media y alta montaña.

de biomas adyacentes involucre o

26

Giraldo-Cañas: Flora xerofítica, Boyacá - Colombia Del mismo modo, los datos aquí Literatura citada analizados permiten sugerir la necesidad

de continuar las exploraciones florísticas Antezana, C. & G. Navarro 2002.

en la región, con el ánimo de incrementar Contribución al naálisis biogeográfico y fortalecer el conocimiento de su flora y catálogo preliminar de la flora de los y su vegetación, y asimismo, en aras valles secos interandinos del centro de a desarrollar una propuesta para la Bolivia. Revista Boliviana de Ecología declaratoria de un área natural protegida, 12 (1): 3–38.

toda vez que en este tipo de ecosistemas Arakaki, M., C. Ostolaza, F. Cáceres & secos de montaña no hay ninguna área J. Roque. 2006. Cactaceae endémicas protegida en Colombia. Por otra parte, del Perú. Revista Peruana de Biología sería clave emprender investigaciones 13 (2): 193–219.

en torno de la fauna local, la cual es muy

diversa (obs. pers.), representada por Bernal, R., S. R. Gradstein & M. Celis.

cuatro especies de ranas, dos especies de 2016. Catálogo de plantas y líquenes de serpientes, dos especies de zarigüellas Colombia. Volúmenes I y II. Instituto (“faras”), dos especies de escorpiones, de Ciencias Naturales, Universidad once especies de arañas, así como Nacional de Colombia, Bogotá D. C.

varias especies de ciempiés, milpiés, Betancur Alarcón, L. 2015. Uno de cada armadillos, ratones y murciélagos, cuatro ecosistemas en Colombia está en además de numerosas especies de aves e peligro crítico. Periódico El Tiempo, 3

insectos, principalmente abejas, avispas, de agosto de 2015, página 8. Bogotá D.

abejorros,

hormigas,

hemípteros, C.

dípteros y coleópteros (aunque poca

riqueza de mariposas y polillas).

Bono, G. 1996. Flora y vegetación del

Estado Táchira, Venezuela. Monografie

Por último, cabe destacar que la región XX, Museo Regionale di Scienze de Villa de Leyva (Boyacá), conserva Naturali, Torino.

una excepcional riqueza de fauna

vertebrada fósil (véanse las referencias Carvajal Cogollo, J. E. & J. O. Rangel-en Páramo-Fonseca et al. , 2016), lo cual Ch. 2022. Flora y vegetación del le imprime una mayor importancia al departamento de Boyacá. Universidad áea estudiada. Asimismo, los arbustales Pedagógica y Tecnológica de Colombia, densos y los bosques secos bajos del Tunja.

altiplano cundiboyacense (región a la

que pertenece el área estudiada de Villa Cerón Martínez, C. E. 2015. Bases para de Leyva) sólo poseen un remanente del el estudios de la flora ecuatoriana.

3% o unas 1860 hectáreas (Betancur Universidad Central del Ecuador, Quito.

Alarcón 2015) y están catalogados como Christenhusz, M. J. M., M. F. Fay & M.

uno de los ocho casos más graves en W. Chase. 2017. Plants of the world.

cuanto a la conservación de ecosistemas An illustrated encyclopedia of vascular en Colombia (Betancur Alarcón, 2015). plants. Royal Botanic Gardens, Kew.

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Cinchonia Vol. 21, #1, 2026

29

de las familias vasculares está basada Pecluma sp.

en Christenhusz et al. (2017), excepto Phlebodium decumanum (Willd.) J. Sm.

para Agavaceae, la cual fue segredada Phlebodium pseudoaureum (Cav.) recientemente

de

Asparagaceae Lellinger

(Nyffeler & Eggli, 2020; Thiede & Pleopeltis astrolepis (Liebm.) E. Fourn.

Eggli, 2020).

Pleopeltis bombycina (Maxon) A. R.

Sm.

## Lycopodiidae

Pleopeltis × leucospora (Klotzsch) T.

## Lycpodiaceae

### Moore

Palhinhaea cernua (L.) Vasc. & Franco Pleopeltis macrocarpa (Willd.) Kaulf.

Pleopeltis polypodioides (L.) E. G.

## Selaginellaceae

Andrews & Windham

Selaginella sellowii Hieron.

Serpocaulon triseriale (Sw.) A. R. Sm.

Selaginella sp.

Serpocaulon sp. nov.

equisetaLes

## Pteridaceae

Cheilanthes myriophylla Desv.

## Equisetaceae

Cheilanthes sp.

Equisetum giganteum L.

Pellaea ovata (Desv.) Weath.

Equisetum bogotense Kunth

Pellaea ternifolia (Cav.) Link

## HeLecHos Leptosporangiados

Pityrogramma ebenea (L.) Proctor

Aspleniaceae

## Schizaeaceae

Asplenium praemorsum Sw.

Anemia villosa Willd.

Blechnum occidentale L.

## nympHaeanae

Blechnum sp. (nativa)

Thelypteris patens (Sw.) Small

## Nymphaeaceae

Nymphaea elegans Hook.

## Dennstaedtiaceae

Pteridium sp.

magnóLidas

Gleicheniaceae

## Piperaceae

### Dicranopteris

flexuosa

(Schrad.) Peperomia angularis C. DC.

Underw.

Peperomia galioides Kunth

Sticherus revolutus (Kunth) Ching

Peperomia santanderana Trel. & Yunck.

Piper aduncum L.

## Polypodiaceae

Elaphoglossum lingua (C. Presl) Brack. monocotiLedóneas Elaphoglossum sp. 1

## Amaryllidaceae

Elaphoglossum sp. 2

Nothoscordum gracile (Aiton) Stearn

Nephrolepis sp. 1

Nephrolepis sp. 2

## Araceae

Pecluma camptophyllaria (Fée) M. G. Anthurium scandens (Aubl.) Engl.

Price

Anthurium glaucospadix Croat

30

Giraldo-Cañas: Flora xerofítica, Boyacá - Colombia Agavaceae

Eleocharis elegans (Kunth) Roem. & Agave americana L.

Schult.

Agave cordillerensis Lodé & Pino

Eleocharis sp. nov.

Agave sylvesteriana Giraldo-Cañas

Fimbristylis complanata (Retz.) Link Furcraea cabuya Trel.

Kyllinga brevifolia Rottb.

Furcraea foetida (L.) Haw.

Kyllinga odorata Vahl

Furcraea selloana K. Koch

Rhynchospora nervosa (Vahl) Boeckeler Rhynchospora rugosa (Vahl) Gale

## Asparagaceae

Scleria distans Poir.

Echeandia flavescens (Schult. & Schult.

f.) Cruden

## Dioscoreaceae

Dioscorea sp.

## Bromeliaceae

Catopsis sessiliflora (Ruiz & Pav.) Mez Hydrocharitaceae Puya sp. nov.

Limnobium laevigatum (Willd.) Heine

Racinaea tenuispica (André) M. A. Hypoxidaceae Spencer & L. B. Sm.

Hypoxis decumbens L.

Racinaea tetrantha (Ruiz & Pav.) M. A.

Spencer & L. B. Sm.

## Iridaceae

Tillandsia clavigera Mez

Crocosmia × crocosmiiflora (Lemoine)

Tillandsia denudata André

N. E. Br.

Tillandsia elongata Kunth

Gladiolus communis L.

Tillandsia fendleri Griseb.

Sisyrinchium chilense Hook.

Tillandsia incarnata Kunth

Sisyrinchium micranthum Cav.

Tillandsia recurvata (L.) L.

## Juncaceae

Tillandsia tovarensis Mez

Juncus effusus L.

Tillandsia usneoides (L.) L.

Juncus microcephalus Kunth

Vriesea myriantha (Baker) Betancur

Juncus tenuis Willd.

Commelinaceae

## Orchidaceae

Callisia gracilis (Kunth) D. R. Hunt

Altensteinia fimbriata Kunth

Commelina diffusa Burm. f. (nativa)

Cyclopogon peruvianus (C. Presl)

Tripogandra multiflora (Sw.) Raf.

Schltr.

Epidendrum arachnoglossum André

## Cyperaceae

Epidendrum elongatum Jacq.

Bulbostylis asperula (Poir.) C. B. Clarke Epidendrum fimbriatum Kunth Bulbostylis junciformis (Kunth) C. B. Epidendrum ibaguense Kunth Clarke

Habenaria sp.

Carex albolutescens Schwein.

Prosthechea grammatoglossa (Rchb. f.)

Cyperus niger Ruiz & Pav.

W. E. Higgins

Cyperus virens Michx.

Prosthechea sceptra (Lind.) W. E.

Eleocharis geniculata (L.) Roem. & Higgins Schult.

Stelis sp. 1

Cinchonia Vol. 21, #1, 2026

31

Stelis sp. 2

Eragrostis pastoensis (Kunth) Trin.

Stenorrhynchos speciosum (Jacq.) Rich. Eragrostis tenuifolia (A. Rich.) Steud.

Heteropogon contortus (L.) Roem. & Poaceae

Schult.

Agrostis subrepens (Hitchc.) Hitchc.

Holcus lanatus L.

Agrostis stolonifera L.

Jarava ichu Ruiz & Pav.

Andropogon aequatoriensis Hitchc.

Lolium multiflorum Lam.

Anthaenantia lanata (Kunth) Benth.

Lolium perenne L.

Anthoxanthum odoratum L.

Megathyrsus maximus (Jacq.) B. K.

Aristida laxa Cav.

Simon & S. W. L. Jacobs

Axonopus aureus P. Beauv.

Melinis minutiflora P. Beauv.

Axonopus compressus (Sw.) P. Beauv.

Melinis repens (Willd.) Zizka

Axonopus fissifolius (Raddi) Kuhlm.

Mnesithea sp. nov.

Axonopus scoparius (Flüggé) Kuhlm.

Muhlenbergia cenchroides (Willd.) P.

Bothriochloa saccharoides (Sw.) Rydb. M: Peterson Bouteloua curtipendula (Michx.) Torr.

Muhlenbergia phalaroides (Kunth) P.

Bromus catharticus Vahl

M. Peterson

Calamagrostis viridiflavescens (Poir.) Muhlenbergia rigida (Kunth) Kunth Steud.

Nassella mucronata (Kunth) R. W. Pohl

Cenchrus bambusiformis (E. Fourn.) Nassella sp. nov.

Morrone

Oplismenus burmannii (Retz.) P. Beauv.

Cenchrus clandestinus

(Chiov.) Paspalum conjugatum P. J. Bergius Morrone

Paspalum humboldtianum Flüggé

Cenchrus setaceus (Forssk.) Morrone

Paspalum juergensii Hack.

Chloris ciliata Sw.

Paspalum macrophyllum Kunth

Cortaderia jubata (Lemoine ex Paspalum notatum Flüggé Carrière) Stapf

Paspalum sp.

Cynodon dactylon (L.) Pers.

Phyllostachys aurea Rivière & C.

Dichanthelium aciculare (Poir.) Gould Rivière

& C. A. Clark

Poa annua L.

Dichanthelium acuminatum (Sw.) Polypogon elongatus Kunth Gould & C. A. Clark

Polypogon monspeliensis (L.) Desf.

Digitaria andicola Giraldo-Cañas

Schizachyrium sanguineum (Retz.)

Digitaria cardenasiana Giraldo-Cañas

Alston

Digitaria ciliaris (Retz.) Koeler

Setaria parviflora (Poir.) Kerguélen Digitaria velutina (Forssk.) P. Beauv.

Sporobolus bogotensis Swallen &

Echinochloa colona (L.) Link

García-Barr.

Eleusine indica (L.) Gaertn.

Sporobolus indicus (L.) R. Br.

Eragrostis airoides Nees

Sporobolus purpurascens (Sw.) Ham.

Eragrostis intermedia Hitchc.

Steinchisma hians (Elliott) Nash

Eragrostis lugens Nees

Tripogon spicatus (Nees) Ekman

Eragrostis mexicana (Hornem.) Link

Trisetum irazuense (Kuntze) Hitch.

32

Giraldo-Cañas: Flora xerofítica, Boyacá - Colombia Typhaceae

R. M. King & H. Rob.

Typha domingensis Pers.

Baccharis macrantha Kunth

Baccharis pedunculata (Mill.) Cabrera

## eudicotiLedóneas

Baccharis trinervis Pers.

## Acanthaceae

Bidens andicola Kunth

Stenandrium dulce (Cav.) Nees

Bidens pilosa L.

Calea peruviana Benth. ex S. F. Blake

## Adoxaceae

Chaptalia nutans (L.) Pol.

Viburnum tinoides L.f.

Chromolaena leivensis (Hieron.) R. M.

King & H. Rob.

## Amaranthaceae

Chromolaena perglabra (B. L. Rob.) R.

Alternanthera caracasana Kunth

M. King & H. Rob.

Alternanthera pungens Kunth

Clibadium surinamense L.

Amaranthus hybridus L.

Conyza bonariensis (L.) Cronquist

Chenopodium ambrosioides L.

Conyza primulifolia (Lam.) Cuatrec. & Iresine diffusa Willd.

Lourteig

## Anacardiaceae

Cotula mexicana (DC.) Cabrera

Mauria heterophylla Kunth

Eirmocephala brachiata (Benth.) H.

Schinus areira L.

Rob.

Elephantopus mollis Kunth

## Apiaceae

Emilia fosbergii Nicolson

Cyclospermum leptophyllum (Pers.) Erigeron bonariensis L.

Sprague

Erigeron canadensis L.

Spananthe paniculata Jacq.

Erigeron karvinskianus DC.

Erigeron primulifolius (Lam.) Greuter

## Apocynaceae

Galinsoga parviflora Cav.

Asclepias curassavica L.

Gamochaeta simplicicaulis (Willd. ex

Ditassa longiloba Benth.

Spreng.) Cabrera

Oxypetalum cordifolium (Vent.) Schltr.

Heterosperma pinnatum Cav.

## Apodanthaceae

Hypochaeris radicata L.

Pilostyles boyacensis F. González & Montanoa ovalifolia DC.

Pabón-Mora

Noticastrum marginatum (Kunth)

Cuatrec.

## Asteraceae

Pseudognaphalium sp.

Achyrocline mollis Benth.

Pterocaulon alopecuroides (Lam.) DC.

Achyrocline sp.

Schkuhria pinnata (Lam.) Thell.

Acmella ciliata (Kunth) Cass.

Senecio madagascariensis Poir.

Acmella repens (Walter) Rich.

Sonchus asper (L.) Hill

Ageratina sp.

Stevia lucida Lag.

Ageratum conyzoides (L.) L.

Tithonia diversifolia (Hemsl.) A. Gray

Ambrosia peruviana Willd.

Tragopogon porrifolius L.

Austroeupatorium inulifolium (Kunth) Verbesina sp. 1

Verbesina sp. 2

Cinchonia Vol. 21, #1, 2026

33

Villanova oppositifolia Lag.

## Ericaceae

Wedelia calycina Rich.

Bejaria resinosa L. f.

Cavendishia bracteata (J. St. Hil.)

## Bignoniaceae

### Hoerold

Tecoma stans (L.) Kunth

Gaultheria erecta Vent.

Brassicaceae

## Escalloniaceae

Cardamine flexuosa With.

Escallonia pendula (Ruiz & Pav.) Pers Lepidium trianae Thell.

Euphorbiaceae

## Cactaceae

Croton pungens Jacq.

Cylindropuntia tunicata (Lehm.) F. M. Euphorbia cyathophora Murray Knuth

Euphorbia orbiculata Kunth

Hylocereus megalanthus (Vaupel) Ralf Euphorbia peplus L.

Bauer

Mammillaria columbiana Salm-Dyck

## Fabaceae

Melocactus andinus N. P. Taylor

Acaciella angustissima (Mill.) Britton Opuntia ficus-indica (L.) Mill.

& Rose

Opuntia schumannii A. Berger

Calliandra sp.

Crotalaria sp.

## Campanulaceae

Dalea cuatrecasasii Barneby

Lobelia tenera Kunth

Desmanthus leptophyllus Kunth

## Caryophyllaceae

Desmodium mollicumum (Kunth) DC.

Silene gallica L.

Desmodium uncinatum (Jacq.) DC.

Galactia lindenii Burkart

## Clusiaceae

Indigofera suffruticosa Mill.

Clusia alata Planch. & Triana

Inga vera Willd.

## Convolvulaceae

Inga sp.

Cuscuta grandiflora Kunth

Medicago sp.

Dichondra repens J. R. Foster & G. Melilotus albus Medik.

Forst.

Otholobium mexicanum (L.f.) J. W.

Evolvulus bogotensis Ooststr.

Grimes

Evolvulus sp.

Phaseolus dumosus Macfad.

Ipomoea purpurea (L.)

Senna viarum (Little) H. S. Irwin & Barneby

## Cordiaceae

Stylosanthes guianensis (Aubl.) Sw.

Varronia bullulata (J. Estrada & García- Tara spinosa (Molina) Britton & Rose Barr.) J. S. Mill.

Trifolium pratense L.

Trifolium repens L.

## Crassulaceae

Vachellia macracantha (Willd.) Seigler

Echeveria ballsii E. Walther

& Ebinger

Kalanchoe densiflora Rolfe.

Zornia reticulata Sm.

34

Giraldo-Cañas: Flora xerofítica, Boyacá - Colombia Hypericaceae

Psidium guineense Sw.

Hypericum thesiifolium Kunth

Syzygium jambos (L.) Alston

Lamiaceae

## Nyctaginaceae

Hyptis pectinata (L.) Poit.

Mirabilis prostrata (Ruiz & Pav.) Hyptis sidiifolia (L’Her.) Briq.

Heimerl

Stachys bogotensis Kunth

Stachys calcicola Epling

## Onagraceae

Ludwigia peruviana (L.) H. Hara

## Loasaceae

Oenothera multicaulis Ruiz & Pav.

Mentzelia scabra Kunth

Orobanchaceae

## Lythraceae

### Castilleja fissifolia

Cuphea ciliata Ruiz & Pav.

Oxalidaceae

## Malvaceae

Oxalis debilis Kunth

Anoda cristata (L.) Schltdl.

Oxalis filiformis Kunth

Pavonia sepioides Fryxell & Krapov.

Oxalis latifolia Kunth

Sida cordifolia L.

Oxalis lotoides Kunth

Sida rhombifolia L.

Oxalis medicaginea Kunth

Triumfetta bogotensis DC.

Wissadula sp.

## Passifloraceae

Passiflora bogotensis Benth.

## Melastomataceae

Passiflora edulis Sims

Clidemia ciliata D. Don

Passiflora ligularis Juss.

Leandra lindeniana (Naudin) Cogn.

Passiflora manicata (Juss.) Pers.

Tibouchina lindeniana Cogn.

Miconia theizans (Bonpl.) Cogn.

## Phyllanthaceae

Phyllanthus niruri L.

## Moraceae

Phyllanthus salviifolius Kunth

Ficus americana Aubl. subsp. andicola (Standl.) C. C. Berg

## Phytolaccaceae

Ficus velutina Humb. & Bonpl. ex Phytolacca octandra L.

Willd.

Picramniaceae

## Myricaceae

Picramnia sphaerocarpa Planch.

Morella parvifolia (Benth.) Parra-Os.

## Plantaginaceae

Morella pubescens (Willd.) Wilbur

Mecardonia procumbens (Mill.) Small Myrtaceae

Plantago major L.

Calycolpus moritzianus (O. Berg) Plantago sp.

Burret

Scoparia dulcis L.

Myrcianthes alaternifolia (Benth.) Polygalaceae Grifo ex B. Holst & M. L. Kawasaki

Polygala paniculata L.

Cinchonia Vol. 21, #1, 2026

35

Polygonaceae

## Salicaceae

Polygonum hydropiperoides Michx.

Salix humboldtiana Willd.

Rumex obtusifolius L.

Xylosma spiculifera (Tul.) Triana & Planch.

## Portulacaceae

Portulaca oleracea L.

## Santalaceae

Phoradendron nervosum Oliv.

## Primulaceae

Myrsine latifolia (Ruiz & Pav.) Spreng. Sapindaceae Myrsine coriacea (Sw.) Roem. & Schult. Dodonaea viscosa (L.) Jacq.

Rosaceae

## Schrophulariaceae

Hesperomeles obtusifolia (Pers.) Lindl. Verbascum virgatum Stokes Rubus sp.

Solanaceae

## Rubiaceae

Cestrum sp.

Coccocypselum lanceolatum (Ruiz & Datura stramonium L.

Pav.) Pers.

Lycianthes lycioides (L.) Hassl.

Diodella apiculata (Roem. & Schult.) Solanum americanum Mill.

Delprete

Solanum dolichosepalum Bitter

Galianthe bogotensis (Kunth) E. L. Solanum nigrescens M. Martens & Cabral & Bacigalupo

Galeotti

Galium canescens Kunth

Solanum sisymbriifolium Lam.

Mitracarpus hirtus (L.) DC.

Solanum stellatiglandulosum Bitter

Sabicea villosa Schult.

Spermacoce capitata Ruiz & Pav.

## Verbenaceae

Spermacoce prostrata Aubl.

Duranta mutisii L. f.

Spermacoce suaveolens (G. Mey.) Lantana boyacana Moldenke Kuntze

Lantana camara L.

Verbena litoralis Kunth

36

Giraldo-Cañas: Flora xerofítica, Boyacá - Colombia Agradecimientos

A la Universidad Nacional de Colombia

y al Herbario Nacional Colombiano

(COL) por todas las facilidades

brindadas para llevar a cabo esta

investigación. A los diferentes botánicos

que confirmaron o corrigieron algunas

de las determinaciones realizadas por

el autor de la presente contribución

[José Carmelo Murillo (helechos),

Julio Betancur (Bromeliaceae), Cristian

Castro (Orchidaceae), Guillermo Pino

Infante (Crassulaceae), Deivid Andrés

Fonseca Cortés (Fabaceae), Ángelo

Danilo

Plata-Castro

(Moraceae),

Lucas Lima (helechos), Carlos Parra

(Myricaceae, Myrtaceae), Nicolás

Ramírez (Asteraceae), Orlando Rivera

(Apiaceae), Nelson Salinas (Ericaceae),

Wilson Rodríguez (helechos), Humberto

Mendoza (Melastomataceae), Édgar

Linares (criptógamas no vasculares),

José Luis Fernández Alonso (Lamiaceae,

Nyctaginaceae),

Charlotte

Taylor

(Rubiaceae), Roberto Manuel Salas

(Rubiaceae), David Sanín (helechos)].

Al comité editorial y a los evaluadores

por su grata ayuda en el proceso de

publicación de esta contribución.

## Conflictos de intereses

El autor declara no tener conflictos de

intereses.