Evaluación de la sensibilidad de 5 métodos diagnósticos de la leshmaniasis cutánea
Resumen
En el presente trabajo se compara cinco diferentes métodos diagnósticos y la efectividad del tratamiento, en un estudio con 49 pacientes, a los que luego del diagnóstico clínico de la (s) lesión (es), se realizó Raspado y/o Frotis, Prueba Cutánea de Montenegro (PCM), Cultivo, Biop- sia e Inmuno flúores cencía Indirecta (IFA). La sensibilidad de las pruebas, son confrontadas con el diagnóstico clínico y la remisión de las lesiones en un 100 ojo posterior al tratamiento empleado (Glucantin y Pentostan), a dosis convencionales. Los resultados en cuanto a porcentajes de positividad son para el Raspado y/o Frotis 42,86 o ¡o, Cultivo 67,35 ojo, Prueba Cutánea de Montenegro 97,96 o/o, Biopsia 55,10 o/o e IFA 67,35 o/o, lo que estadísticamente nos demuestra una alta sensibilidad para la Prueba Cutánea de Montenegro.
Descargas
Métricas
Citas
2. Armjjos, R., et al. Human cutaneous leishmaniasis in Ecuador: Identification of parasites by enzyme electrophoresis. Am. J. Trop. Med. Hyg. 42 (5), 1990, pp 424-428 (89-119).
3. León, L. Formas clínicas de la Leishmaniasis tegumentaria americana. Pren, Med. Arg. 1975,62:73.
4. Hashiguchi, Y., et al. Andean leishmaniasis in Ecuador caused by infection with Leishmania mexicana and L. mayor-like parasitcs. Am. J. Trop. Med. Ilyg, 44(2), 1991, pp 205-217(90-165).
5. Kristen, W., et al. Diagnosis oí cutaneous and mucocutaneóus leishmaniasis in Colombia: a comparation of seven methods. Am. J. Trop. Med. Hyg., 36 (3), 1987, pp 489- 496.
6. Mayses, S., and Brodskyn, G. A new liquid médium withóut blood and serum for culture of hemoflagellates. Am. J. Trop. Med. Hyg., 35 (5), 1986, pp 942-944.
7. Restrepo, M. La reacción de'Montenegro en la epidemiología de la Leishmaniasis sudamericana. Bol. Of. Sanit. Panam, 1980, 89 (2).
8. Meló, M., .et ál. Padronizacao do antígeno de montenegro, Rev. Inst. Med. Trop. Sao Paulo. 1977, maio-junho, 19 (3): 161-164.
9. Bray, R. Leishmaniasis. Inmunologieal inves- tigation of tropical parasitic diseases. Ed. Churchill Livingstonei 1980. pp 65-74.
10. Badaró, R., et al. Ininunofluorescent antibo- dy test in american visceral leishmamasis: sensitivity and specificity of difl'ercnt uior- phological forms of two leishmania speeies. Am. J. Trop. Med. Hyg. 32 (3), 1983, pp 480-484.
11. Latif, B., Al-shenawi., Al-alousi, T. The indirect fluorescent antibody test for diagnosis of kala-azar infection in Iraq. Annals of tropical Medicine and Parasitology, 1979, Yol. 73, No. 1.
12. Anthony, R., et al. Rapid detection of leishmania amastigotes in fluid aspirates and biopsies of human tissues. Am. J. Trop. Med. Hyg., 37(2), 1987, pp 271-276.
13. Pappas, G., et al. Evaluation of promastigotes and amastigotes antigens in the indirce fluorescent antibody test for American cutaneous leishmaniasis. Am. J. Trop. Med. Hyg., 1983, 32:1260-1267.
14. Walton, B.C., Brooks, W.H., and Aronja, I., Serodiagnosis of American cutaneous leishmaniasis aiilibody test. Am. J. Trop. Med. Hyg. 1972, 21:296-299.
15. Biagi, F., Tay, J.,and Murray, R. La reacción de inmunofluorcscencia en el diagnóstico de la enfermedad de Chagas. Bol. Ofic. Sanil. Panam , 1964, 57:234-240.
16. Camargo, M.E., Fluorescent antibody test for serodiagnosis of American tripanosomiasis. Technical modilfication amploying preserved culture fonns of Trypanosoma cruzi in a slide test. Rev. Inst. Med. Trop. S. Paulo, 1966, 8:227-234.
17. Behrofouz, N., Rezai, 11., and Geltner, S. Application of inmúnofluoreseence to de-' teolion of antibody in Leishmania infection. Ann.Trop. Med.Paiasitol. 1976,70:293-301.
18. Shaw, J. and Laison, R., A simply prepared amastigotes Leishmania antigen for use in the indirect fluorescent antibody test for Lei.shrnaniasis, J. Parasitol., 1977, 63:384- 385.
19. Marin. F., fie Lomas, and (»at< ía-Peua- nui>ia, P. Mass cnllivaliori of leishmania. Ai.ti. Sor. 15el. Med. Trop., Í9H2, 62:169- 171. :m .